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【字体: 大 中 小 】 时间:2009年05月18日 来源:生物通
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来自中国科学院植物研究所光合作用与环境分子生理学重点实验室,南京农业大学,德国波恩大学的研究人员利用细胞生物学手段,深入研究了裸子植物白皮松花粉管生长过程中,一氧化氮(NO)对钙离子、微丝骨架、囊泡转运和细胞壁构建的调节作用。这一成果发表在New Phytologist(2009,182(4): 851-862)杂志上。
生物通报道:来自中国科学院植物研究所光合作用与环境分子生理学重点实验室,南京农业大学,德国波恩大学的研究人员利用细胞生物学手段,深入研究了裸子植物白皮松花粉管生长过程中,一氧化氮(NO)对钙离子、微丝骨架、囊泡转运和细胞壁构建的调节作用。这一成果发表在New Phytologist(2009,182(4): 851-862)杂志上。
领导这一研究的是分子发育生物学研究中心的林金星博士,其早年毕业于北京大学,1992-1994年进入中国科学院植物研究所博士后流动站工作,是“国家杰出青年基金”以及中国科学院“****”入选者,也是植物分子与发育生物学首席研究员。
进入2009年,林金星博士研究所连续发表了多篇论文,分别就钙调蛋白和植物细胞壁等多方面进行了研究。其中发表在JBC上主要围绕钙调蛋白进行的研究被选为Nature China研究亮点。
NO作为重要的信号分子,参与调控花粉管极性生长。在这篇文章中,研究人员通过应用显微注射、非损伤微测、免疫荧光标记等技术,发现NO释放剂促进花粉萌发和花粉管伸长,并且具有浓度效应,而抑制剂则抑制花粉萌发和花粉管生长,具有浓度效应,同时使花粉管顶端膨大,丧失极性;NO释放剂促进胞外Ca2+内流,顶端Ca2+浓度梯度增加,NO抑制剂抑制胞外Ca2+内流,顶端Ca2+浓度梯度降低;NO释放剂还能够促进囊泡运输,使花粉管顶端的细微丝束解聚,相反,NO抑制剂抑制囊泡运输,促进花粉管中微丝聚合,尤其在花粉管顶端形成粗的微丝束,并一直延伸到花粉管的最顶端;此外,NO使花粉管顶端酯化果胶增加而酸性果胶降低。
研究结果说明:在白皮松花粉管中,NO促进胞外Ca2+内流,从而维持胞内Ca2+浓度梯度,进而影响花粉管顶端微丝骨架的组装,促进囊泡运输,使花粉管顶端酯化果胶累积,最终促进花粉管的正常生长。
附:
林金星
1961年3月出生,福建龙岩人,博士,首席研究员。现任植物分子与发育生物学研究中心主任。
E-----mail:linjx@ibcas.ac.cn
电 话:010-62836211
传 真:010-82594821
英文网页:http://linlab.ibcas.ac.cn
研究方向 :植物细胞与生殖生物学
学习、工作经历
1992年获北京大学理学博士, 1992-1994年进入中国科学院植物研究所博士后流动站工作。1995年晋升为研究员,1996年获得博士生导师资格。“国家杰出青年基金”获得者,中国科学院“****”入选者。
学术与社会任职
现在担任全国政协委员、北京市政协委员、北京植物学会理事长,兼任南开大学、中国科大研究生院、北京师范大学、东北师范大学等兼职教授,《Plant Signaling and Behavior》副主编 、《Communicative and Integrative Biology》编委、《科学通报》特约编委、《植物学报》副主编、《植物科学进展》副主编、《电子显微学报》副主编、《植物学通报》编委、中国植物学会植物结构与生殖生物学专业委员会主任等、国家自然科学基金委员会植物学科评审组成员、《中国青年科技奖》评审组成员。
成果与奖励 :1996年获第五届“中国青年科技奖”。
承担项目
近五年来,主持国际组织资助项目2项,从国外获得经费16.8万美元;主持中国科学院重点项目1项,国家自然科学基金项目3项; 另外,参加其他课题3项。
原文摘要:
Nitric oxide modulates the influx of extracellular Ca2+ and actin filament organization during cell wall construction in Pinus bungeana pollen tubes
ABSTRACT
• Nitric oxide (NO) plays a key role in many physiological processes in plants, including pollen tube growth. Here, effects of NO on extracellular Ca2+ flux and microfilaments during cell wall construction in Pinus bungeana pollen tubes were investigated.
• Extracellular Ca2+ influx, the intracellular Ca2+ gradient, patterns of actin organization, vesicle trafficking and cell wall deposition upon treatment with the NO donor S-nitroso-N-acetylpenicillamine (SNAP), the NO synthase (NOS) inhibitor Nω-nitro-L-arginine (L-NNA) or the NO scavenger 2-(4-carboxyphenyl)-4, 4, 5, 5-tetramethylimidazoline-1-oxyl-3-oxide (cPTIO) were analyzed.
• SNAP enhanced pollen tube growth in a dose-dependent manner, while L-NNA and cPTIO inhibited NO production and arrested pollen tube growth. Noninvasive detection and microinjection of a Ca2+ indicator revealed that SNAP promoted extracellular Ca2+ influx and increased the steepness of the tip-focused Ca2+ gradient, while cPTIO and L-NNA had the opposite effect. Fluorescence labeling indicated that SNAP, cPTIO and L-NNA altered actin organization, which subsequently affected vesicle trafficking. Finally, the configuration and/or distribution of cell wall components such as pectins and callose were significantly altered in response to L-NNA. Fourier transform infrared (FTIR) microspectroscopy confirmed the changes in the chemical composition of walls.
• Our results indicate that NO affects the configuration and distribution of cell wall components in pollen tubes by altering extracellular Ca2+ influx and F-actin organization.