叶酸-多聚精胺纳米颗粒递送双gRNA CRISPR/Cas9系统敲除B2M基因实现MHC I类分子清除的优化策略
《Gene Reports》:Optimized delivery of dual-gRNA CRISPR/Cas9 via FolicPolySpermine nanoparticles for MHC class I elimination through B2M gene knockout
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时间:2025年10月04日
来源:Gene Reports 0.9
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本研究开发了基于精胺、聚乙二醇和叶酸的FolicPolySpermine纳米颗粒,可高效递送靶向B2M基因的双gRNA与Cas9系统。该非病毒载体在HEK293T细胞中实现了特异性基因敲除,其转染效率与lipofectamine 2000相当,为器官移植排斥反应提供了新型基因治疗解决方案。
AAV(腺相关病毒)|BME(B2m外显子1)|BMI(B2m内含子1)|CRISPR(成簇规律间隔短回文重复序列)|DCC(二环己基碳二亚胺)|DLS(动态光散射)|DSB(双链断裂)|FA(叶酸)|FC(流式细胞术)|FACS(荧光激活细胞分选)|GFP(绿色荧光蛋白)|HEK 293(人胚胎肾293细胞)|HDR(同源定向修复)|MHC(主要组织相容性复合体)|NHS(N-羟基琥珀酰亚胺)|NHEJ(非同源末端连接)|PEG(聚乙二醇)|gRNA(向导RNA)|SPE(精胺)
采用在线CRISPR工具(http://crispr.mit.edu/)设计了两对靶向B2m外显子1(BME)和内含子1(BMI)的向导RNA(表1)。两个gRNA在DNA序列上的间距达2.2 kb。将各gRNA的正义链和反义链寡核苷酸杂交形成双链体,随后将每个双链体导入PX458(addgene #48138)表达质粒的FastDigest BpiI(FD1014, Thermo Scientific)限制位点。该质粒包含U6启动子驱动的gRNA支架和CMV启动子表达的Cas9-GFP融合蛋白。
通过菌落PCR和直接测序验证了双sgRNA质粒构建过程的可靠性。分光光度法确认了合成质粒的质量和浓度。PCR扩增结合凝胶电泳和桑格测序证实,在B2m基因的两个向导RNA靶点之间成功删除了约2.2 kb的基因组片段。值得注意的是,在缺失区域侧翼观察到插入/缺失突变(indels)的变异现象。
基因组编辑为细胞移植的多个领域带来新机遇,包括干细胞治疗(例如校正自体细胞中的突变)和异种移植(例如沉默供体中异种抗原编码基因)。CRISPR/Cas9因其简便性、多功能性和易用性正快速取代先前的编辑平台。Cas9核酸酶的理性设计显著降低了脱靶事件的发生率且未影响效率。临床前研究证实了CRISPR/Cas9在体外和体内编辑中的巨大潜力。
由精胺、聚乙二醇与叶酸共轭组成的FolicPolySpermine纳米颗粒,在递送CRISPR/Cas9系统关键组分方面的效能与商品化lipofectamine 2000相当。因此,FolicPolySpermine为向人类细胞靶向递送CRISPE/Cas9系统提供了一种经济、安全且便捷的载体。
(注:此处保留原文两个Conclusion的翻译结构)
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