自噬相关红黄乳菇多糖的结构及其肝保护活性

《Carbohydrate Polymers》:Structure and hepatoprotective activity of autophagy-related Butyriboletus roseoflavus polysaccharide

【字体: 时间:2026年04月15日 来源:Carbohydrate Polymers 12.5

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  酒精性肝病(ALD)治疗挑战大,新型多糖BRP2从Butyriboletus roseoflavus中分离,结构含α-Gal和β-Fuc等寡糖链,可改善急性/慢性ALD小鼠模型肝脂沉积和DNA损伤,通过调控肠道菌群(富集Akkermansia,抑制Desulfovibrio),降低TMAO水平,激活AMPK/Sirt1/mTORC1通路促进自噬。

  
孙振|张环|叶尔肯比克·迪莉达|王璐|张永峰|王春月|孔凡格|李宇|王迪|李兰州
中国教育部食用与药用真菌工程研究中心,吉林农业大学植物保护学院,长春,130118,中国

摘要

酒精性肝病(ALD)由于有效药物治疗方法的缺乏而成为一个日益严重的治疗挑战。本文从Butyriboletus roseoflavus中分离出一种新型多糖BRP2,并对其结构进行了表征。该多糖的骨架由→6)-α-Galp-(1→, →2,6)-α-Galp-(1→, 和 →2,6)-β-Manp-(1?→?3)-β-Fucp-(1→ 组成。这种独特的多糖在急性和慢性ALD模型中显著改善了肝脏脂肪变性和DNA损伤。机制上,BRP2通过富集Akkermansia菌群并抑制Desulfovibrio菌群,从而重塑了肠道微生物群,导致微生物代谢物三甲胺N-氧化物(TMAO)的水平显著降低。TMAO水平的降低减轻了AMPK磷酸化的抑制,并增强了Sirt1去乙酰化酶的活性,进而抑制了mTORC1信号通路。这一系列作用显著激活了肝脏保护性自噬,表现为p62/SQSTM1水平下降和LC3-II水平上升。总体而言,本研究揭示了一条由BRP2驱动、依赖微生物群和TMAO的通路,该通路通过AMPK/Sirt1/mTORC1介导的自噬轴来缓解ALD,为基于多糖的肝脏疾病干预提供了新的见解。

引言

酒精性肝病(ALD)包括从脂肪肝到肝炎、肝硬化和肝细胞癌等多种肝脏损伤(Chao等人,2023年)。它导致了全球大量的死亡病例,且与ALD相关的死亡人数正在增加——这一趋势预计将持续(Liu等人,2023年;Ventura-Cots等人,2022年)。 越来越多的证据表明,长期饮酒、高饱和脂肪饮食或接触肝毒性物质会破坏肠道屏障的完整性,引发肠道菌群失调。在人类和啮齿动物中,长期饮酒会逐渐损害肠道屏障。由此导致的通透性增加促进了病原菌的扩散,使细菌、真菌及其相关的病原体分子模式或内毒素进入血液循环并到达肝脏,从而引发炎症和疾病进展(Ha等人,2022年)。饮酒会选择性富集某些革兰氏阴性菌群,如PrevotellaDesulfovibrioHelicobacter,这些菌群的丰度与肝脏炎症和损伤相关(LeBrun等人,2020年)。研究表明,肠道细菌Akkermansia的减少与酒精性肝炎的严重程度升高有关(Lang等人,2020年)。这些关键细菌还调节自噬过程。例如,某些病原菌如HelicobacterPrevotella可能抑制自噬活性,而有益菌如Akkermansia则被认为能促进自噬,从而帮助维持肠道和肝脏的稳态。 从机制上看,乙醇代谢会产生乙醛和活性氧,这些物质会损害溶酶体功能并抑制自噬体-溶酶体的融合,从而阻碍自噬过程。结果,自噬相关蛋白LC3-II的水平降低,而p62/SQSTM1积累,表明自噬降解受到抑制。LC3-II和p62的表达受上游激酶ULK1的调控(Ding等人,2023年),其活性同时受到mTORC1介导的抑制和AMPK依赖的激活(Qian等人,2021年),从而在整体上控制着自噬的启动。这种自噬的抑制加剧了ALD的关键病理特征,包括脂肪肝、炎症和纤维化。 已有几种物质,包括tiopronin、bifendate和silibinin(Sil),被用于减轻肝细胞损伤(Gohari Mahmoudabad等人,2023年;Wang等人,2025年)。然而,它们的临床应用受到不良反应、生物利用度低以及疗效和安全性证据不足的限制(Song等人,2018年;Wang等人,2025年)。尽管肝脏移植目前被认为是晚期ALD的最终治疗方法,但由于供体短缺、住院时间延长和终身免疫抑制,它给患者和医疗系统带来了巨大的经济负担(Gao等人,2025年)。因此,寻找新的安全有效药物来预防或治疗ALD至关重要。作为现有临床治疗的替代方案,天然产物因其显著的治疗效果和良好的安全性而受到广泛关注(Yuan等人,2019年)。迄今为止,多糖及其衍生物展示了多样的生物活性,使其成为多种应用领域极具前景的候选物质(Dou等人,2025年;Niu等人,2025年)。除了已知的广谱生物活性外,来自Ganoderma lucidumHericium erinaceus等来源的蘑菇多糖因其显著的肝脏保护潜力而成为研究重点(Yang等人,2020年)。我们之前的研究表明,Morchella esculenta中的多糖通过泛素特异性肽酶10(Usp10)/核因子κB(NF-κB)/核因子红系-2相关因子2(Nrf2)信号通路调节慢性饮酒小鼠肝脏中的细胞因子水平和氧化应激(Teng等人,2023年)。 Butyriboletus属包括外生菌根真菌,其中Butyriboletus roseoflavus(Hai B. Li & Hai L. Wei)D. Arora & Frank,2014年)是中国西南部特有的新物种,这一发现基于2014年对模式标本和补充样本的综合形态学和系统发育分析(Arora & Frank,2014年;Li等人,2013年)。B. roseoflavus通过其淡粉色至玫瑰色的菌盖、柠檬黄至金黄色的菌肉以及基部增大的菌柄(具有相同的黄色网状结构)与其他同类菌种有明显的形态差异(Li等人,2013年)。B. roseoflavus多糖被认为是该菌的主要生物活性成分(Tian等人,2022年)。然而,目前尚无研究探讨B. roseoflavus多糖的抗ALD活性。关于多糖结构及其治疗机制的科学研究仍然相对有限。 在本研究中,从B. roseoflavus中纯化出一种具有保护肝脏作用的多糖BRP2,并对其结构进行了表征,其骨架由→6)-α-Galp-(1→, →2,6)-α-Galp-(1→, 和 →2,6)-β-Manp-(1?→?3)-β-Fucp-(1→ 组成。利用急性和慢性ALD小鼠模型,BRP2通过激活自噬来减轻肝脏损伤,这一发现为未来B. roseoflavus在ALD管理中的应用提供了理论基础。
粗多糖的制备
从中国浙江省丽水市收集了B. roseoflavus的子实体。通过70°C下热水提取2.5小时(液固比为20:1)从中分离出多糖。提取后,使用Sevag试剂去除水溶性提取物中的蛋白质。然后通过乙醇沉淀获得粗多糖。
柱层析
粗多糖在DEAE-52柱上通过逐步洗脱(0, 0.1, 和 ...)进行分离。
BRP2的纯化与结构特征
B. roseoflavus中热水提取的粗BRP使用DEAE-agarose柱进行纯化。得到三种多糖组分,分别命名为BRP-A、BRP-B和BRP-C,它们通过逐步增加NaCl浓度(0, 0.1, 和 0.3 M)进行洗脱(图1A)。BRP-B和BRP-C显著减轻了HepG2细胞中的乙醇诱导损伤(P < 0.05;图1B)。由于BRP-B的产量较高,进一步使用Sephacryl? S-400(图1C)和Chromdex 200 pg柱进行纯化(图1D)。
讨论
在本研究中,从B. roseoflavus中分离出一种名为BRP2的多糖,并对其结构进行了表征,其主要链由→6)-α-Galp-(1→, →2,6)-α-Galp-(1→, 和 →2,6)-β-Manp-(1?→?3)-β-Fucp-(1→ 组成,其中→2,6)-α-Galp-(1?→?或 →2,6)-β-Manp-(1?→?的C-2位点部分被α-Fucp-(1→, α-Manp-(1→, α-Fucp-(1?→?6)-α-Glcp-(1→, 或 α-Manp-(1?→?6)-α-Glcp-(1→)取代。在急性和慢性ALD模型中,BRP2的给药显著减轻了肝脏损伤。
结论
本研究从B. roseoflavus中分离出了BRP2这种中性多糖,其主要链由→6)-α-Galp-(1→, →2,6)-α-Galp-(1→, 和 →2,6)-β-Manp-(1?→?3)-β-Fucp-(1→ 组成,并证明了其在急性和慢性ALD小鼠模型中的肝脏保护作用。研究结果表明,BRP2主要通过激活自噬来缓解ALD,为其作为ALD辅助治疗的潜在应用奠定了基础。
CRediT作者贡献声明
孙振:撰写 – 审稿与编辑,撰写 – 原稿,方法学,数据管理,概念化。 张环:数据管理。 叶尔肯比克·迪莉达:数据管理。 王璐:形式分析。 张永峰:验证。 王春月:方法学,数据管理。 孔凡格:验证,方法学。 李宇:监督。 王迪:撰写 – 审稿与编辑,监督,资金获取,概念化。 李兰州:撰写 – 审稿与编辑,监督,资金获取。
伦理声明
所有动物实验均符合《实验室动物伦理审查指南》、《实验动物护理和使用指南:第八版》以及吉林大学机构动物护理和使用委员会的规定(伦理编号:SY202502016和SY202406016)。
利益冲突声明
作者声明没有已知的财务利益或个人关系可能影响本文的研究结果。
致谢
本研究得到了吉林省科技发展计划(20250102319JC)和中国农业研究体系(CARS-20(食用蘑菇)专项资金的支持。
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