驱动髓系细胞活化的CAR-T细胞相关因子表征研究

《Gene Therapy》:Characterization of CAR-T cell factors that contribute to myeloid cell activation

【字体: 时间:2026年05月28日 来源:Gene Therapy 4.5

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  嵌合抗原受体(CAR)T细胞疗法在血液系统恶性肿瘤治疗中展现出显著疗效,但其临床应用常伴随炎症毒性反应,包括细胞因子释放综合征(CRS)与免疫效应细胞相关神经毒性综合征(ICANS)。这类毒性反应的发生与旁观者髓系细胞活化(BMCA)及后续白细胞介素-6(IL

  
嵌合抗原受体(CAR)T细胞疗法在血液系统恶性肿瘤治疗中展现出显著疗效,但其临床应用常伴随炎症毒性反应,包括细胞因子释放综合征(CRS)与免疫效应细胞相关神经毒性综合征(ICANS)。这类毒性反应的发生与旁观者髓系细胞活化(BMCA)及后续白细胞介素-6(IL-6)、IL-1β等促炎细胞因子释放密切相关。既往研究已分别报道CAR-T细胞分泌的粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)、干扰素-γ(IFN-γ)及肿瘤坏死因子α(TNFα)在毒性发生中的作用,但针对CAR-T来源炎症因子的系统性解析仍较缺乏。本研究对活化的人外周血来源CAR-T细胞分泌的可溶性因子进行表征,并评估其在BMCA中的作用。通过对人T细胞亚群(含CAR-T细胞)的细胞因子比较分析,研究人员鉴定出多个参与BMCA的候选因子;抗体中和实验证实GM-CSF、IFN-γ、TNFα及糖蛋白Ibα(GPIbα)是驱动BMCA的核心因子;此外,通过小干扰RNA(siRNA)介导的上述因子敲低可显著降低BMCA水平,且不影响CAR-T细胞的抗肿瘤活性。研究结果与既往关于GM-CSF、IFN-γ、TNFα在CAR-T治疗中介导炎症毒性的报道一致,并首次明确GPIbα是此前未被识别的CAR-T相关炎症毒性贡献因子。通过抗体阻断或基因修饰靶向这些因子,有望成为降低炎症毒性、提升CAR-T疗法安全性的有效策略。

论文解读

CAR-T细胞疗法已革新血液系统恶性肿瘤的治疗格局,为难治性癌症患者带来高缓解率,但该疗法常伴随致死性炎症毒性,以细胞因子释放综合征(CRS)和免疫效应细胞相关神经毒性综合征(ICANS)最为突出。现有临床管理主要依赖托珠单抗(IL-6受体拮抗剂)、阿那白滞素(IL-1受体拮抗剂)及糖皮质激素,但存在患者响应异质性大、部分患者无效、药物穿透血脑屏障能力不足及潜在额外毒性等问题。既往研究提示CAR-T细胞活化后分泌的GM-CSF、IFN-γ、TNFα可驱动髓系细胞活化并放大炎症反应,但单一因子阻断难以完全抑制毒性,且缺乏对CAR-T来源炎症因子的系统性解析,同时完全删除关键细胞因子可能影响CAR-T抗肿瘤活性,因此明确核心炎症介质并探索兼顾安全性与有效性的干预策略具有重要临床意义。该研究发表于《Gene Therapy》。
研究人员采用的主要技术方法包括:从健康供体外周血单个核细胞分离原代T细胞与单核细胞,构建抗CD19 CAR-T细胞;通过TCR依赖(抗CD3/CD28激活)、TCR非依赖(PMA/离子霉素激活)及CAR依赖(与CD19?靶细胞共培养)三种方式活化CAR-T细胞,收集上清用于后续分析;采用细胞因子阵列筛选活化CAR-T细胞分泌的差异因子;通过抗体中和实验验证候选因子功能;利用siRNA介导CAR-T细胞中目标基因敲低,评估其对髓系细胞活化及CAR-T细胞功能的影响;所有实验均设置独立健康供体重复,统计分析采用Student’s t检验及单因素方差分析。

可溶性因子驱动旁观者髓系细胞活化

研究人员首先证实,经TCR依赖、TCR非依赖或CAR依赖方式活化的原代T细胞与CAR-T细胞上清,均可显著诱导原代人单核细胞及THP-1单核细胞系分泌IL-6与IL-1β,且上述细胞因子仅来源于活化的髓系细胞,而非T或CAR-T细胞自身分泌,明确活化T细胞来源的可溶性因子是BMCA的核心驱动因素。

CAR-T细胞细胞因子谱比较鉴定炎症候选因子

对比TCR依赖(收获期上清)与CAR依赖(与Daudi细胞共培养上清)活化的CAR-T细胞细胞因子谱,研究人员筛选出13种在两种活化条件下均上调超过10倍且在静息CAR-T中未检出的共享炎症因子:IFN-γ、GM-CSF、TNFα、IL-13、IL-16、IL-31、MIP-1α、MIP-1β、IP-10、I-309、M-CSF、IL-17A、IL-17F;同时结合前期CAR-NK研究线索,将未包含于阵列的GPIbα纳入候选。

T细胞来源GPIbα活化髓系细胞

研究人员发现静息T细胞仅在胞内表达GPIbα,活化后该蛋白分泌至上清且胞内水平显著降低;重组GPIbα可直接诱导原代人单核细胞分泌IL-6;中和活化T细胞或CAR-T细胞上清中的GPIbα可显著降低髓系细胞IL-6与IL-1β分泌,且该中和处理不影响CAR-T细胞对CD19? Nalm6靶细胞的杀伤活性。

中和研究证实CAR-T分泌炎症因子驱动髓系活化

对上述14种候选因子逐一中和显示,单独阻断IFN-γ、GM-CSF、GPIbα或TNFα均可使髓系细胞IL-6与IL-1β分泌平均降低≥50%,其余因子仅部分影响IL-1β或无明显作用;组合中和实验表明,同时阻断四种核心因子对IL-6的抑制效果显著优于单因子或双因子阻断,但IL-1β调控存在独立通路特征,且不同供体对单一因子阻断的响应存在异质性,支持多靶点联合干预的必要性。

siRNA介导核心炎症因子敲低降低髓系活化

研究人员通过siRNA分别敲低CAR-T细胞中IFN-γ、GM-CSF、TNFα、GPIbα的单组、两组或四组组合,证实所有敲低策略均可显著降低活化CAR-T上清诱导的髓系细胞IL-6与IL-1β分泌,且不影响CAR-T细胞活力、IL-2分泌及对不同效靶比的靶细胞杀伤活性,也未改变CAR-T细胞的增殖与扩增能力。
讨论部分指出,该研究首次系统性鉴定出CAR-T细胞来源的IFN-γ、GM-CSF、TNFα、GPIbα是驱动BMCA的核心因子,其中GPIbα为全新发现的炎症介质,三者亦存在于CAR-NK细胞的BMCA驱动体系中,提示其为淋巴细胞共有的炎症通路。研究同时揭示单一因子阻断的局限性及供体间响应差异,支持多靶点联合策略在提升CAR-T安全性中的价值。研究结论强调,通过抗体阻断或基因编辑靶向上述因子可在不损害CAR-T抗肿瘤效力的前提下有效降低炎症毒性,为下一代安全型CAR-T疗法的设计提供了机制依据与转化方向。
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